在国内正规库中，细胞来源、培养体系、问题描述及预期要求至关重要。首先，针对细胞培养中的痛点，我们需要分析前后处理步骤，明确问题所在。同时，我们也应列出在文献中对关键因子理解的见解，并推荐一些知名的大型厂家来作为可靠的选择。

针对团聚现象，如成团成片，我们提供处理方案和效果分析。作为解决方案，我们建议使用PG电子的胰酶试剂进行试用，特别是对那些对胰酶敏感的细胞，更推荐用下种子库备份一组。值得注意的是，许多数据需要长期积累。如果涉及到自动化、超量培养及超长传代，胰酶的使用至关重要，这一点在难以培养的细胞种子库的统计数据中得到了验证。

我们预计可以解决以下问题：首先是转染细胞后死细胞过多的问题。在难养的细胞系中，如Hep3B和SKBR3等，转染后的死细胞比例通常较高。经过相关配套试剂的应用，转染效果已有显著提升，这在国内已有多个实验室进行了评测与案例分享。因此，我们鼓励新手首先专注于提升细胞质量的一致性，并对培养中频繁出现的死细胞问题进行深入讨论。

其次，在冻存复苏过程中，死细胞过多也是一个常见困扰，尤其是难养细胞生长速度较慢的特性。在排除耗材和技术影响后，我们发现虽然生长速度缓慢，但仍有一定的规律可循。我司在DMSO传统冻存方案上有深厚的积累，推荐根据国内外用户使用的广泛性与技术成熟度进行选择，面对相关问题时能提供充足的技术储备。值得一提的是，为了顺利实现自动化冻存开发，建议新手确认能成功培养难养细胞后再考虑使用自动化设备。

在案例细胞的分类及自动化培养方面，各类细胞的培养特点各异，因此我们可以先从几个难度较大的细胞系开始研究，如乳腺、肝、胰岛及免疫细胞。对于前两个细胞系，我们已经开始合作并取得了理想的实验案例结果。

对于原代用户，建议关注与难养细胞相关的自建系讨论，后续将优化培养体系，涵盖增殖培养速度的提升、培养体系的优化以及单克隆筛选等方面。此外，海归用户可以探讨珍贵株细胞在国内的备份体系及其特点，长期验证过程中也需结合国内试剂体系。

如涉及文章发表，我们建议在发表后共享实验方案（protocol）以进行验证。如果您碰到棘手的问题且无文献支撑，欢迎咨询我们PG电子的团队，我们可能会对接行业内的大牛及一线技术人员。值得注意的是，自动化培养设备通常较为昂贵，然而我们目前正在与国内多家实验室进行合作，以便在后续的研究中便捷进行预实验而无需额外考虑费用。

长期从事相关研究的用户可以注明自己的研究方向，以便后期更新时我们给予反馈。同时，临床医生也请标注，我们希望在细胞培养后诊断应用方面与您进行更多合作。病理医生可注明，我司在细胞培养后的诊断应用上会有更多进展。